Литература

1. Меньшиков, В. В. Карциноидный синдром / В. В. Меньшиков, Л. С. Бассалык, Г. А. Шапило // Медицина. — 1972.

2. Симоненко, В. Б. Карциноидные опухоли желудочно-кишечного тракта / В. Б. Симоненко // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. — 1998, № 51. — С. 93–98.

3. Орел, Н. Ф. Карциноидные опухоли / Н. Ф. Орел // VII Российский онкологический конгресс. — М., 2003. — С. 50–53.

УДК 616.155.34

ОЦЕНКА СПОНТАННОЙ И ИНДУЦИРОВАННОЙ ФОРМЫ ГИБЕЛИ

НЕЙТРОФИЛОВ КРОВИ ЗДОРОВЫХ ЛИЦ

Гусакова Н. В., Макеева К. С.

Научный руководитель: д. м. н., профессор И. А. Новикова

Учреждение образования

«Гомельский государственный медицинский университет»

г. Гомель, Республика Беларусь

Нейтрофильные гранулоциты (НГ) — короткоживущие клетки, которые погибают в процессе реализации своего бактерицидного потенциала и отличаются такими формами гибели, как апоптоз, некроз и нетоз, каждая из которых участвует а развитии, течении и прогнозе инфекционной патологии различного генеза [3]. Так, установлено, что задержка апоптоза нейтрофилов при хирургическом сепсисе коррелирует с высоким риском развития полиорганной дисфункции и летального исхода [2]. С другой стороны, показано, что усиление апоптоза активированных НГ лежит в основе иммунологической «ареактивности» при гнойно-инфекционных процессах [1, 3]. В условиях массивного воздействия бактериальных токсинов, НГ гибнут путем некроза, вызывая при этом повреждение окружающих тканей и способствуя развитию синдрома системной воспалительной реакции (SIRS) [3]. В последние годы открыт и расшифрован еще один, отличающийся от апоптоза и некроза, механизм активной клеточной смерти — нетоз [4]. Оказалось, что гранулоциты, в ответ на микробные и немикробные стимулы, формируют во внеклеточном пространстве сетеподобные структуры (neutrophil extracellular traps, NET), состоящие из нуклеиновых кислот, белков-гистонов и гидролитических ферментов. Клинические исследования в этом направлении немногочисленны. Продемонстрировано нарушение формирования NET при хронической гранулематозной болезни, гнойно-септических процессах у детей. Учитывая вышеизложенное можно сделать вывод, что различные виды деструкции нейтрофилов дополняют друг друга в процессе реализации их функциональных свойств.

Цель исследования

Оценить способность нейтрофилов к различным видам спонтанной и индуцированной клеточной гибели.

Материалы и методы исследования

Материалом для исследования служили лейкоциты периферической венозной крови 17 практически здоровых лиц в возрасте 19–45 лет. Клетки получали путем отстаивания гепаринизированной крови (10 Ед. / мл) в течение 45 мин при 37 °С, отбирали нижний слой плазмы с лейкоцитарной пленкой, количество нейтрофилов в суспензии доводили до концентрации 5×10⁶ клеток/мл путем разведения необходимым количеством 0,9 %-ного раствора NaCl.

Интенсивность процессов апоптоза, некроза и нетоза оценивали после инкубации клеточной взвеси в течение 150 минут при 37 °С в среде (спонтанный уровень) и в присутствии растворимых продуктов S. аureus (стимулированный уровень). Для получения растворимых продуктов предварительно переносили одну полную стандартную бактериальную петлю суточной культуры S. aureus в 100 мл питательной среды RPMI – 1640. Микробную взвесь инкубировали 24 часа при 37 °С, центрифугировали при 1000 г в течение 30 мин, надосадочную жидкость отбирали, пропускали через стерилизующий фильтр с диаметром пор 0,22 мкм и хранили до использования при – 20 °С. Далее клеточную суспензию центрифугировали 5 мин при 250 г, осадок наносили на предметное стекло, окрашивали смесью акридинового оранжевого (АО; 100 мкг/мл) в сочетании с этидиумом бромидом (ЭБ; 100 мкг/мл) [5]. Затем заключали мазки под покровные стекла и анализировали препараты с помощью люминесцентного микроскопа ZEISS Axio Star plus HBO 50/AC (λ_{возбуждения} 490 нм; λ_{эмиссии} 520 нм; увеличение ×1000). Определяли долю жизнеспособных, некротических и апоптотических клеток, а также количество образовавшихся NET, подсчитывая не менее 200 нейтрофилов.

Статистический анализ проводился с использованием непараметрических методов, результаты выражали в виде Me (25, 75 %), где Me — медиана, 25 % — нижний квартиль, 75 % — верхний квартиль.

Результаты и их обсуждение

При микроскопии препаратов, окрашенных АО и ЭБ (метод двойного флуорохромирования), мы произвели дифференцированный подсчет нейтрофилов, в зависимости от морфологических проявлений клеточной гибели. Известно, что АО избирательно окрашивает нуклеиновые кислоты и вызывает зеленое свечение клеток, а ЭБ — красное. При этом у нативных лейкоцитов цитоплазматическая мембрана непроницаема для ЭБ, а при повреждении клетки происходит поглощение красителя и специфическая окраска ядра.

Живые (нативные) нейтрофилы представляли собой клетки, ядро которых имело рыхлую, неоднородную структуру и бледно-зеленую флуоресценцию за счет АО. Ядра апоптотически измененных нейтрофилов, напротив, характеризовались конденсацией хроматина в виде ярких, плотных, однородно окрашенных сфер или полумесяцев, которые также имели зеленое свечение. Специфическим признаком некроза НГ являлась маргинация хроматина в виде глыбок красно-оранжевого цвета, вследствие накопления ЭБ. Тонкие свободнолежащие ярко-зеленые нити, занимающие пространство, в 2–3 раза превосходящее диаметр неизмененного нейтрофила, расценивали как NET [4].

Результаты проведенных исследований приведены в таблице 1.

Таблица 1 — Уровень спонтанной и индуцированной гибели НГ крови здоровых лиц (n = 17)

Как видно из таблицы 1, культивирование НГ с растворимыми продуктами S. аureus приводит к увеличению числа клеток вступивших как в апоптоз и нетоз, так и подвергнувшихся некротическим изменениям (33 % (29; 35), 11 % (10; 12) и 2 % (1; 2) соответственно). При этом интенсивность апоптоза нейтрофилов в присутствии стимулятора положительно коррелировала с показателями нетоза (r_s = 0,5; р = 0,037).

Таким образом, метод одновременной оценки индуцированной и стимулированной форм гибели НГ может быть использован в качестве дополнительного теста функциональной характеристики активности нейтрофилов, что позволит оптимизировать подходы к мониторингу и прогнозированию течения инфекционных заболеваний.