5.2. Методы изолирования веществ и их теоретические основы
Большинство «нелетучих» ядов, являясь слабыми кислотами или слабыми основаниями, способны существовать в водном растворе в виде ионизированных или неионизированных (молекулярных) форм в зависимости от рН среды. Степень ионизации вещества (слабой кислоты или слабого основания) и необходимое для этого значение рН могут быть определены из уравнения степени ионизации (уравнение Гендерсона):
для кислот
для оснований
где рКa – показатель ионизации вещества (– lgK), численно равный значению рН, при котором в растворе в равновесной концентрации присутствуют ионизированная и неионизированная (молекулярная) формы (т.е. вещество ионизировано на 50 %). Эта величина постоянная для данного вещества.
Для большинства слабых кислот и слабых оснований рКа приведены в монографии Альберта и Сержента «Константы ионизации кислот и оснований». Сильные кислоты (НNОз и др.) и сильные основания (NaOH) ионизированы на 100 % в широком интервале рН.
На основании уравнения Гендерсона, зная рН раствора, всегда можно вычислить степень ионизации вещества и, наоборот, если необходимо достичь определённой степени ионизации, всегда можно рассчитать необходимое для этого значение рН.
Степень ионизации вещества всегда приходится учитывать при изолировании ядов из биологического материала, так как растворимость ионизированных и неионизированных форм различна в воде и органических растворителях.
Ионизированные формы, которым соответствуют соли кислот и оснований, как правило, хорошо растворимы в воде и ограниченно растворимы в неполярных органических растворителях (хлороформ и эфир).
Неионизированные (молекулярные) формы, которым соответствуют свободная кислота и основание, наоборот, хорошо растворимы в неполярных растворителях и ограниченно растворимы в воде.
Пользуясь различной растворимостью ионизированных и молекулярных форм «нелетучих» ядов в воде и органических растворителях легко сформулировать принцип их изолирования, из биологического материала.
Изолирование «нелетучих» ядов из биологического материала основано на различной растворимости их ионизированной и молекулярной форм в воде и органических растворителях и на коэффициенте распределения молекулярной формы между водной и органической фазами.
где :
Кр – коэффициент распределения молекулярной формы;
Со и Св – концентрации вещества в водной и органической фазах соответственно.
Очевидно, что, чем больше Кр, тем эффективнее идет экстракция.
В процессе изолирования «нелетучих» ядов из биологического материала взаимодействуют 3 компонента: яд, биологический материал и экстрагент.
При исследовании тканевого материала (внутренние органы трупа) изолирование состоит из двух стадий: извлечение яда из твердой фазы (объект) в водную, и извлечение яда из водной фазы в органический растворитель.
Схематично это может быть представлено следующим образом:
I стадия экстракции II стадия экстракции
В лабораторных условиях экстракцию обычно проводят с помощью делительной воронки. В воронку помещают исследуемый раствор, содержащий растворенное вещество, подлежащее экстрагированию, и не смешивающийся с водой органический растворитель, которым извлекается экстрагируемое вещество из водного раствора. Воронка энергично встряхивается (обычно 2-5 мин). При этом обе жидкие фазы диспергируются друг в друга, образуя капли различного размера. Экстрагируемое вещество через границу раздела водной и органической фаз переходит из водной фазы в органическую до тех пор, пока в системе не наступит межфазное равновесие, при котором достигаются равновесные концентрации экстрагируемого вещества в водной и в органической фазах. При достижении межфазного равновесия скорость перехода растворенного вещества из водной фазы в органическую становится равной скорости перехода того же вещества из органической фазы в водную, т.е. осуществляется состояние динамического равновесия. После прекращения встряхивания обе жидкие фазы расслаиваются, причем тем быстрее, чем больше разница в плотности воды (водного раствора) и применяемого органического растворителя, плотность которого может быть как выше, так и ниже плотности воды.
При исследовании биологических жидкостей (кровь, моча, промывные воды) необходимость в первой стадии изолирования отпадает и сразу проводится экстракция в органический растворитель.
5.2.1. Факторы, влияющие на эффективность изолирования «нелетучих» ядов из биоматериала
Эффективность изолирования веществ на I и II стадиях определяется рядом факторов.
На первой стадии на эффективность изолирования вещества будут влиять такие факторы, как:
1. Растворимость яда в используемом экстрагенте.
Поскольку на первой стадии используются полярные растворители (вода), яд должен находиться в водорастворимом (ионизированном) состоянии, т.е. кислоты и основания должны присутствовать в виде своих солей, а степень ионизации а > 100 %.
Необходимое для этого значение рН может быть рассчитано из уравнения степени ионизации Гендерсона. На практике пользуются более простым правилом. Для того, чтобы полностью перевести вещество в ионизированное состояние, необходимо создать
рН = рКа + 2(3) – для кислот ирН = рКа– 2(3) – для оснований.
Отсюда очевидно, что для переведения кислот в ионизированное состояние (т.е. в их соли) нужна щелочная реакция среды. Так, если для барбитуратов рКа = 7 – 8, то
рН = рКа + 2 (3) = (7 – 8) + 2 (3) = 10и выше.
Для оснований же требуется кислая реакция среды. Так, для атропина
рК = рКа – 2 (3) = 9,6 – 3 = 6,6.
Слабоосновные алкалоиды полностью ионизированы уже в сильно кислой среде, например, для кофеина рН = 2,0 (рКа = 4,0).
Кислая реакция среды (рН = 2) приводит, кроме того, к разрушению комплексов алкалоидов с белками, в виде которых они находятся в биологическом материале, что увеличивает выход алкалоидов. Влияние рН на эффективность изолирования «нелетучих» ядов особенно выражено при использовании в качестве экстрагента воды, т.к. этанол в большинстве случаев является хорошим растворителем и для ионизированной, и для молекулярной форм кислот и оснований.
2. Экстрагент
Кроме реакции среды, на степень изолирования в значительной мере влияет природа экстрагента, его количество, время и кратность экстракции.
К экстрагенту предъявляются следующие основные требования:
· способность легко проникать в клетки тканей;
· высокая растворяющая способность (по отношению к яду);
· селективность (по отношению к анализируемым соединениям). Селективный растворитель в какой-то мере исключает загрязнение вытяжки балластными веществами – жирами, белками, пигментами и другими.
Растворители, которые обладали бы всеми этими свойствами в полной мере, встречаются редко. В химико-токсикологическом анализе наиболее часто используются следующие растворители: диэтиловый эфир, хлороформ, бензол, н-амилацетат, этилацетат, н-бутиловый, изоамиловый, изобутиловый спирты, н-гексан, н-гептан.
В большей мере этим требованиям отвечает вода, несколько в меньшей степени – этиловый спирт, который является почти универсальным растворителем для лекарственных веществ. Основным недостатком этанола является способность экстрагировать совместно с анализируемыми веществами нормальные компоненты биоматериала (белки, жиры, пигменты), что усложняет анализ, приводя к дополнительным методам очистки и потерям значительных количеств искомых веществ.
Количество экстрагента обычно берётся вдвое больше по отношению к весу органов (1 : 2). Большие количества экстрагента, хотя и увеличивают эффективность экстракции, приводят к разбавлению извлечения и усложнению последующих операций, связанных с концентрированием веществ в извлечении.
Время экстракции определяется моментом наступления равновесия в концентрациях вещества между твёрдой и жидкой фазами, что устанавливается экспериментально (по прекращению прироста концентрации вещества в экстрагенте). Для воды оно меньше (около 2 часов) по сравнению с этанолом (более 4 – 6 часов).
Кратность экстракции приводит к увеличению выхода вещества за счёт поступления новых порций растворителя. Для извлечения искомых соединений из внутренних органов возможны такие способы, как однократная и многократная экстракция, т.к. непрерывная экстракция требует специальной аппаратуры.
При использовании метода экстракции отсутствует химическое превращение разделяемых веществ и не образуются побочные продукты. Вещества, выделенные с помощью метода экстракции, как правило, не содержат примесей, связанных с процессами адсорбции и окклюзии. Этот метод может использоваться для разделения термолабильных веществ. Применение метода экстракции для концентрирования позволяет переводить вещества из сильноразбавленных растворов в небольшой объем органического растворителя.
3. Немаловажную роль в экстракции играет и степень измельчённости объекта, что обеспечивает максимальный доступ растворителя к искомому веществу (площадь соприкосновения твердой и жидкой фаз), но одновременно увеличивает количество соэкстрактивных веществ.
Вторая стадия изолирования «нелетучих» ядов заключается в выделении их из водного извлечения путём экстрагирования органическим растворителем, не смешивающимся с водой, при различных значениях рН среды. Этим достигается концентрирование вещества в извлечении и его частичная очистка от нормальных компонентов биоматериала (не растворимых в данном растворителе).
За счёт экстрагирования веществ вначале из кислого, а затем из щелочного водного раствора, их можно разделить на 2 подгруппы:
1. Вещества, экстрагируемые органическими растворителями из кислого раствора (вещества кислотного, нейтрального и частично слабоосновного характера).
2. Вещества, экстрагируемые из щелочного раствора (вещества основного и частично слабоосновного характера).
Вещества со слабо выраженными основными свойствами могут частично перераспределяться из одной подгруппы в другую. К ним относятся производные пурина: кофеин, теобромин, теофиллин; опийные алкалоиды: папаверин, наркотин; производные индола: бруцин, стрихнин; стероидоподобный алкалоид – вератрин; некоторые синтетические лекарственные средства: антипирин, амидопирин, промедол; производные фенотиазина – аминазин и др.
Для веществ нейтрального характера, не способных к ионизации, практически не требуется создания определённого значения рН, т.к. они экстрагируются органическим растворителем в молекулярной форме из любой среды. Разделение веществ на 2 подгруппы в значительной степени облегчает проведение последующего ненаправленного анализа с целью обнаружения неизвестного яда.
На второй стадии изолирования продолжают играть свою роль уже рассмотренные выше факторы, такие, как:
1) растворимость яда, которая определяется степенью ионизации а и регулируется величиной рН среды;
2) природа экстрагента, его объём, время и кратность экстракции.
Если на первой стадии изолирования веществ данной группы мы стремились перевести их в ионизированное состояние и сделать водорастворимыми, то на второй стадии наша задача заключается в том, чтобы перевести вещества в неионизированную (молекулярную) форму (а > 0), которая хорошо экстрагируется из водной фазы неполярным органическим растворителем. Необходимое для этого значение рН может быть рассчитано из уравнения, имеющего следующий вид:
рН = рКа – 2 (3) для кислот,
рН = рКа + 2 (3) для оснований.
Понятно, что для веществ кислого характера на этой стадии требуется создание кислой среды, а для основных – щелочной.
В качестве экстрагентов веществ из водной фазы подбирают неполярные органические растворители, которые:
а) не смешиваются с водой и по удельному весу (d) значительно отличаются от нее, что предотвращает образование эмульсий в процессе экстрагирования (d = 1,0);
б) имеют низкую температуру кипения, что облегчает их упаривание из экстракта;
в) хорошо растворяют изолируемое вещество и обеспечивают высокий коэффициент распределения его между водной и органической фазами
(Кр = Со/Св).
Коэффициент распределения можно увеличить, добавив в водную фазу электролит, который способствует вытеснению вещества из водной фазы в слой органического растворителя за счет понижения его растворимости в воде (разрушение сольватной оболочки молекул). В качестве электролита используют натрия сульфат, аммония сульфат, натрия хлорид. По данным проф. В.Ф. Крамаренко, наиболее подходящим электролитом при изолировании алкалоидов является аммония сульфат.
Наличие электролита в водной фазе приводит также к осаждению белков, что служит своеобразной очисткой полученного извлечения. Избыточное количество электролита, особенно при изолировании соединений кислотного характера, может привести к значительным потерям искомых веществ за счёт их осаждения.
Исходя из перечисленных выше требований, наиболее подходящим экстрагентом для веществ кислотного характера является эфир, а для веществ основного характера хлороформ.
4. Объём экстрагента, время и кратность экстракций.
Необходимый объём экстрагента при однократной экстракции можно рассчитать, исходя из уравнения степени экстракции (Е):
где:
КP– коэффициент распределения;
VВ– объём водной фазы;
V0– объём органической фазы.
Время экстракции обычно не превышает 5 минут, т.к. экспериментально доказано, что за этот период времени большинство органических соединений переходит из водной в органическую фазу.
Кратность экстракции обычно составляет 2 – 3, что обеспечивает полноту извлечения вещества за счёт поступления свежих порций растворителя.
Влияние температуры на экстракцию. Изменение температуры влияет на константу распределения экстрагируемого вещества. Это объясняется тем, что при изменении температуры изменяется растворимость экстрагируемых веществ в каждой фазе, а также изменяется взаимная растворимость органической и водной фаз. Причем с изменением температуры растворимость вещества в каждой фазе изменяется неодинаково.
При изменении температуры может изменяться диссоциация и ассоциация вещества в соответствующей фазе. Поэтому при изменении температуры изменяется гидратация (сольватация) и экстрагируемость химических соединений.
Влияние электролитов на экстракцию. Понижение растворимости веществ в водных растворах под влиянием электролитов называется высаливанием, а повышение растворимости – всаливанием.
Высаливание является фактором, понижающим растворимость веществ в воде и повышающим их экстрагируемость органическими растворителями из водных растворов.
5.1.2. Очистка изолируемых веществ от сопутствующих компонентов
При изолировании ядовитых веществ из биоматериала совместно с ними экстрагируются т.н. соэкстрактивные вещества – примеси белков, продуктов их гидролиза – пептидов и аминокислот, липидов и ряда других соединений, которые являются естественными компонентами биоматериала.
Соэкстрактивные вещества в дальнейшем мешают проведению анализа:
1. Маскируют окраску при проведении реакций окрашивания (обугливание соэкстрактивных веществ под действием концентрированной серной кислоты).
2. Снижают чувствительность микрокристаллических реакций и приводят к образованию кристаллов неправильной формы, либо к их полиморфизму (многообразие форм).
3. Искажают спектры веществ при спектральном исследовании в УФ - и ИК-областях.
4. Дают искаженные результаты количественного определения веществ.
5. Многие продукты гнилостного разложения биоматериала дают такие же реакции, как и некоторые ядовитые вещества (например, трупные алкалоиды – путресцин, кадаверин – дают реакции с общеалкалоидными реактивами).
Для получения надежных результатов необходима очистка исследуемых веществ от соэкстрактивных веществ биоматериала. Очистка может быть проведена при подготовке объекта, в процессе изолирования или после него.
На 1 этапе изолирования возможна только грубая очистка, которая проводится путем:
1 – удаления механических загрязнений (мелких частиц биоматериала) фильтрованием, центрифугированием;
2 – осаждения примесей при добавлении соответствующих реагентов, например, осаждение белков абсолютным спиртом, ацетоном, трихлоруксусной кислотой, вольфрамовой, фосфорно-вольфрамовой, фосфорно-молибденовой кислотами, насыщение электролитами (Na2SO4, (NH4)2SO4, NaCI). При этом возможно соосаждение искомых веществ, что ведет к их частичной потере;
3 – изменения состава фаз, т.е. введения другого органического растворителя (связано с большими потерями веществ).
На 2 этапе изолирования или после него возможна более тонкая очистка, которая может осуществляться путем:
1 – реэкстракции, т.е. переведения веществ из одной жидкой фазы в другую при изменении рН раствора (например, очистка барбитуратов и алкалоидов за счет различной растворимости их солеобразных и молекулярных форм в воде и органических растворителях). При этом примеси отделяются от экстрагируемого вещества за счет нерастворимости в используемом экстрагенте. Либо, наоборот, экстрагирование примесей из раствора подходящим экстрагентом (эфир в методе В.Ф. Крамаренко).
2 – сублимации – для веществ, способных возгоняться без разложения при нагревании (салициловая, бензойная кислоты, барбитураты, жидкие алкалоиды).
3 – хроматографии – ионообменной, гель-хроматографии, адсорбционной хроматографии на колонках, тонкослойной хроматографии. Последний вид хроматографии используется часто, т.к. наряду с очисткой дает возможность разделить вещества (их метаболиты) при комбинированных отравлениях и провести их предварительную идентификацию по величинам Rf (хроматографический скрининг «нелетучих» ядов).
- Токсикологическая химия
- 1. Основы токсикологической химии. Организация и основы судебно-медицинской экспертизы в Российской Федерации
- 2. Биохимическая токсикология
- 2.1. Токсикокинетика чужеродных соединений. Общие закономерности распределения веществ в организме
- 2.2. Метаболизм чужеродных соединений.
- 3. Выделение чужеродных соединений.
- 3. Группа веществ, изолируемых минерализацией («металлические яды»
- 3.1. Общая характеристика группы
- 3.2. Токсидинамика и токсикокинетика металлических ядов
- 3.3.Методы минерализации
- 3.3.1.Методы мокрой минерализации
- Метод минерализации смесью концентрированных серной, азотной кислот и воды (1:1:1)
- 3.4. Дробный метод анализа «металлических ядов»
- 3.4.1.Маскировка ионов в дробном анализе
- 3.4.2.Применение органических реагентов в дробном анализе "металлических ядов"
- 3.4.3.Применение диэтилдитиокарбаминовой кислоты и её солей
- 3.4.4.Применение дитизона
- 3.6.1.Свинец
- 3.6.2.Барий
- 3.6.3.Марганец
- 3.6.4.Хром
- 3.6.5.Серебро
- 3.6.6.Цинк
- 3.6.7.Медь
- 3.6.10.Ртуть
- 1. Сборка прибора и вытеснение из него воздуха водородом
- 2. Проверка прибора и реактивов на отсутствие мышьяка
- Современные методы анализа металлов, используеме в аналитической и токсикологической химии (краткий обзор)
- Группа веществ, изолируемых дистилляцией («летучие яды»)
- 4.1. Общая характеристика группы
- 4.2. Современные методы изолирования «летучих ядов»
- 4.3. Токсикологическое значение некоторых летучих ядов
- 4.3.1.Синильная кислота (цианистый водород, нитрил муравьиной кислоты)
- 4.3.2. Алкилгалогениды
- 4.4.Спирты
- 4.4.2. Химические свойства спиртов. Методы анализа в судебно-химической экспертизе отравлений и экспертизе алкогольного опьянения
- 5. Группа веществ, изолируемых из биологического материала экстракцией и сорбцией (лекарственные и наркотические вещества)
- 5.1.Общая характеристика группы. Номенклатура и классификация веществ
- 5.2. Методы изолирования веществ и их теоретические основы
- 5.2.1.Общие и частные методы изолирования
- 5.3. Аналитический скрининг лекарственных веществ, имеющих токсикологическое значение
- 5.4.1. Барбитураты и методы их исследования
- 1. Коматозное состояние и другие неврологические расстройства (оглушённость, сон, отсутствие рефлексов).
- 5.4.2. Кислота салициловая
- 5.4.3. Антипирин
- 5.4.4. Амидопирин
- 5.4.5. Кофеин
- 5.4.6. Теобромин
- 5.4.7. Теофиллин
- 5.5. Алкалоиды
- 5.5.1. Атропин
- 5.5.2. Скополамин
- 5.5.3. Кокаин
- 5.5.4. Новокаин
- 5.5.5. Дикаин
- 5.5.6. Платифиллин
- 5.5.7. Хинин
- 5.5.8. Резерпин
- 5.5.9. Стрихнин
- Алкалоиды, производные изохинолина
- 5.5.10.Морфин
- 5.5.11. Кодеин
- 5.5.12. Этилморфин
- 5.5.13. Апоморфин
- 5.5.14. Промедол
- 5.5.15. Папаверин
- 5.5.17. Наркотин
- 5.5.18. Кониин
- 5.5.19. Ареколин
- 5.5.20. Никотин
- 5.5.21. Анабазин
- 5.5.22. Вератрин
- 5.5.23. Эфедрин
- 5.5.24. Производные фенотиазина
- 5.5.25. Производные 1.4-бензодиазепина
- I этап Гидролиз 1,4-бенз-диазепина
- II этап Гидролизат
- III этап Экстракция 1,4-бенздиазепинов из гидролизата
- IV этап
- 5.6. Аналитическая диагностика острых отравлений, наркотического опьянения. Анализ отдельных групп наркотических средств
- 5.6.1. Понятие о веществах, вызывающих одурманивание
- 5.6.2. Классификация наркотических и одурманивающих веществ
- 5.6.3. Особенности химико-токсикологического анализа на содержание одурманивающих средств
- 5.6.4. Требования, предъявляемые к работе лабораторий, занимающихся анализом наркотических и других одурманивающих веществ
- 5.6.5. Особенности интерпретации результатов при анализе биологических объектов на содержание веществ, вызывающих одурманивание
- 5.6.6. Правила отбора проб на обнаружение наркотических средств, психотропных и других токсических веществ
- 5.6.8. Характеристика биологических объектов. Пробоподготовка
- 5.6.9. Особенности исследования мочи на присутствие наркотиков
- 5.6.10. Экстракция как метод изолирования наркотических и одурманивающих средств. Основные понятия экстракции
- 5.7. Ненаправленный анализ наркотических и одурманивающих веществ
- 5.8. Химико-токсикологический анализ отдельных групп наркотических и одурманивающих веществ (направленный анализ)
- 5.8.1. Производные барбитуровой кислоты
- 5.8.2.Алкалоиды группы опия
- 5.8.3. Производные 1,4-бензодиазепина
- 5.8.4. Производные фенотиазина
- 5.8.5. Каннабиноиды
- 5.8.6. Кокаин
- 5.8.7. Амитриптилин
- 5.8.8. Димедрол (дифенгидрамин)
- 5.8.9. Промедол
- 5.8.10. Эфедрин, эфедрон
- 6. Группа веществ, изолируемых экстракцией и сорбцией. Пестициды
- 6.1. Пестициды как химические загрязнители
- 7. «Химико - токсикологический анализ веществ, изолируемых из объекта настаиванием с водой, с последующим диализом а также требующих или нетребующих особых методов изолирования»